¿Existe una explicación biológica para una diferencia de 0,5 en el tamaño del alelo con el producto de la PCR?

CONTEXTO


Actualmente estoy trabajando en un conjunto de diversidad, esta diversidad en interespecífica (dentro del mismo género). Estoy usando marcadores SSR, los cebadores se diseñaron en una especie y están funcionando muy bien dentro de la especie (mucha diversidad y diferencia entre alelos de al menos 1).
Al probarlos en las otras especies, observo la no amplificación normal que podría deberse a una mutación en la secuencia de ADN del cebador. Pero, para algunos genotipos, he estado observando un nuevo alelo justo entre los dos más antiguos (como el nuevo es 185.5 y los más antiguos eran 185 y 186).

PREGUNTAS


¿Es frecuente ese tipo de observación cuando se utilizan cebadores diseñados en otras especies?
Entiendo cómo podría ocurrir una diferencia de 1 pb CACACA==> CACCACA, pero ¿cuáles podrían ser las explicaciones biológicas para una diferencia de 0,5 pb entre alelos?

Respuestas (1)

En mi experiencia, trabajando con un enfoque similar en Campylobacter jejuni , las mediciones de pares de bases de estas técnicas son imprecisas y deben calibrarse cuidadosamente. No me sorprende ver diferencias de 0,5 pares de bases, esto se puede ver en carreras e incluso, en el peor de los casos, entre pocillos pares e impares en la misma placa (!).

Usaría la secuenciación de Sanger para determinar la secuencia que está obteniendo en uno de sus aislamientos y luego usaría esto como un control de calibración incluido en cada ejecución.

¡Gracias por tus comentarios! Estaba planeando hacer una secuenciación de sanger para entender el problema. Sin embargo, el alelo es bastante estable (la misma longitud en diferentes placas). Usualmente veo todos mis alelos en una variación de 0.5 pb alrededor del valor real dependiendo de los genotipos/series.
@Untitpoi Descubrimos que diferentes objetivos de longitud de la misma cepa y los mismos objetivos de diferentes cepas con frecuencia dieron resultados de longitud diferentes.
@Untitpoi Creo que ocurre debido a las diferencias en la secuencia que causan ligeras diferencias en la movilidad durante la electroforesis capilar. Si observa los datos sin procesar de una lectura de secuenciación, puede ver que los picos aparecen con menos regularidad que los datos de picos procesados ​​suavizados que normalmente observa. Supongo que hay diferencias consistentes en el progreso de las secuencias basadas en las propiedades físicas de los nucleótidos.