Problemas de Laemmli-SDS-PAGE [cerrado]

Hice Laemmli-SDS-PAGE para mi precipitado de sulfato de amonio pero tenía una banda muy débil y una parte muy extraña al final del gel. Por favor, ayúdame a resolver ese problema. Graciasingrese la descripción de la imagen aquí

¿Eliminó el sulfato de amonio por diálisis o similar?
No, no lo hice. Precipité por AS y usé PBS para disolver, agregué tampón y cargué en gel

Respuestas (1)

Tu gel se ve muy bien para mí. Simplemente indica que su precipitado de sulfato de amonio contiene cantidades masivas de esta pequeña proteína en el fondo (sea lo que sea). Las bandas superiores se ven bien, la cantidad cargada es adecuada: no están sobrecargadas como la inferior, pero tampoco demasiado tenues. El hecho de que el primer y el último carril se vean un poco manchados se debe a la enorme cantidad de proteína pequeña (los carriles se ven manchados cuando se sobrecargan tanto). La banda inferior definitivamente es realmente alguna proteína, y no un artefacto de tinción; He visto esta forma antes con proteínas purificadas sobrecargadas en SDS-PAGE.

Una cosa que podría hacer, suponiendo que aún tenga suficientes de estas muestras, es ejecutar un gel complementario con 100 veces menos material. Diluir por un factor de 1/100 en tampón de desnaturalización Laemmli 1X y cargar un nuevo gel con el mismo volumen que para este. Ya no verá las bandas superiores, pero tendrá una banda inferior mucho más limpia a la que, con suerte, podrá asignar un peso molecular aparente (o incluso recortar para la identificación de especificaciones de masa; use guantes y use herramientas limpias si no haz eso, de lo contrario, en su mayoría detectarán la queratina de tu piel).

Suponiendo que el objetivo de este gel era verificar el resultado de la precipitación de sulfato de amonio utilizada como paso de purificación, obviamente no funcionó bien para separar todas estas bandas, y es posible que deba repetir y probar diferentes concentraciones. Pero si la banda inferior es la que está tratando de purificar, entonces tuvo éxito (las bandas superiores representan menos del 10% de contaminación, diría que a simple vista). Si estás interesado en una de las mejores bandas, entonces claramente no funcionó.

¿Es uno de estos carriles el sobrenadante? Si es así, también tiene cantidades masivas de proteína pequeña allí (está en cada carril). Un enriquecimiento tan alto parece sospechoso: ¿podría ser lisozima purificada que agregó durante el procedimiento de purificación para ayudar a romper la pared celular bacteriana? (suponiendo que está tratando de purificar una proteína sobreexpresada en E. coli ).

Gracias por tu respuesta. Me gustaría determinar el peso molecular de la banda inferior, porque cuando superpuse la mitad del gel con patógenos, el lugar de la zona de inhibición es la parte inferior del gel (el segundo carril, al lado de la escalera). Intentaré diluir el tampón como sugieres. Gracias
De acuerdo, entonces, si está interesado en la banda inferior, definitivamente puede diluir (sugerí 1/100, pero es posible que deba probar algunos factores de dilución diferentes hasta que obtenga una banda razonable). También puede usar un gel más denso para hacer que esta banda migre más lentamente (en este gel, parece que esta banda está en el frente de migración). ¿Cuál fue el porcentaje de este gel? Además, si la respuesta le ayudó, márquela como aceptada. :-)
Hola, intenté diluirlo a varias diluciones diferentes pero no era diferente a como era antes, no obtuve una banda razonable. El porcentaje de este gel es del 4-20%. Creo que tal vez el tamaño de este compuesto es más pequeño, 11 KDa (porque usé el marcador Color Protein Standard, 11-245 KDa) o este compuesto no es proteína, como los lípidos.