¿Cuál es el método de muestreo óptimo para modelar el crecimiento de microalgas?

Recientemente, estoy realizando experimentos de cultivo de microalgas (Chlorella sp.) para el modelado matemático del crecimiento de microalgas con respecto al tiempo.

El problema principal es que un análisis del contenido de lípidos en microalgas requiere un gran volumen de medios de cultivo por punto de datos. Especialmente, en la etapa inicial del cultivo, la densidad de las microalgas es muy baja, por lo que se necesita consumir casi el 20 % del medio de cultivo total para obtener un solo punto de datos. Debido a esta limitación, a veces medí solo tres veces (el principio, el medio y el último).

Obviamente, se desean más puntos de datos para el modelado preciso, pero termina con una gran pérdida de medios. Esto puede afectar la calidad de los resultados experimentales generales. Esto parece una especie de compensación. El problema es que no puedo aumentar el tamaño del volumen del reactor en este momento.

¿Alguien podría recomendar cómo llegar al número de muestreo óptimo en esta situación?

Cualquier experiencia, ideas o trabajos recomendados son bienvenidos.

Gracias.

Ajustaría el título de su pregunta, ya que tiene más que ver con el análisis de lípidos que con el crecimiento.

Respuestas (1)

Para este tipo de experimentos, especialmente cuando se habla de modelado, puede valer la pena configurar un quimiostato o al menos un turbidostato. Un ejemplo de tal estudio se puede encontrar en: Crecimiento simultáneo y acumulación de lípidos neutrales en microalgas por Klok et al. ( Pubmed ).

Alternativamente, puede usar tintes de lípidos como Bodipy, pero a menudo son muy difíciles de hacer funcionar y es posible que no penetren en su Chlorella. Nile Red, en cualquier caso, es casi imposible que funcione cuantitativamente a pesar de que se usa bastante, vea los detalles en esta publicación . Tenga mucho cuidado al ir por esta ruta.