Retrocedamos en el tiempo hasta alrededor de 1975. Tengo entendido que en ese momento (o al menos al final de la década), se habían creado bibliotecas genómicas y de cDNA para algunos organismos, por ejemplo, conejos. Estoy interesado en la lógica de las técnicas que primero usaron estas bibliotecas para aislar genes que codifican proteínas particulares. Nota: no estoy interesado en cómo aislaríamos un gen hoy; Quiero entender la historia.
Primero, considere el siguiente experimento mental. Digamos que es alrededor de 1975. La única tarea para mi clase de biología de Cal Tech es increíble: dice lo siguiente. El instructor (¿Tom Maniastis?) me entrega una proteína junto con las células de las que se aisló la proteína, así como bibliotecas genómicas y de ADNc del organismo que produce la proteína; el desafío es aislar el gen que codifica la proteína. No sé nada sobre la proteína excepto que el producto que me han dado es puro.
Por supuesto, la idea básica es simple: aislar el gen examinando las bibliotecas con una sonda de ácido nucleico radiactivo y usando un ensayo de hibridación. Pero, por desgracia, no tengo una sonda complementaria: ¡todo lo que tengo es la proteína! ¿Qué debo hacer?
Aquí hay una solución que puedo imaginar. (No sé si fue posible alrededor de 1975, y mucho menos si realmente sucedió). Podría intentar aislar el ARNm que codifica para mi proteína (pero, ¿cómo hacerlo ? ), luego radiomarcarlo y usar el ARNm radiomarcado. como sonda en un ensayo de hibridación en la biblioteca de ADNc (no en la biblioteca genómica, ya que el ADN sin procesar podría tener regiones no codificantes).
La pregunta, en esencia, es cómo llegar al ADN, dada solo una proteína, alrededor de 1975.
Lo siguiente se basa en un capítulo sobre la clonación del ADN en la décima edición de The Biochemistry of the Nucleic Acids (RLP Adams et al. ) publicado por Chapman & Hall en 1986. (Esto es probablemente más pertinente que la undécima y última edición, que fue publicado en 1992 y tuvo un tratamiento más contemporáneo.) Disculpas por el hecho de que será difícil de encontrar. Debería estar disponible en algunas bibliotecas universitarias ya través de sistemas de préstamo interbibliotecario en ciertos países. La Sección A.7.3 da una idea de la metodología utilizada en ese momento.
Propiedades de las proteínas que podrían utilizarse como base de una estrategia de clonación
Al intentar clonar el ADN de una proteína en particular para la que no había clones preexistentes para usar como sondas de hibridación, había que considerar las propiedades de la proteína que se podía explotar. Estos pueden incluir:
(Claramente, si uno no tuviera ese 'manejo' de la proteína, no estaría en posición de tratar de clonar su ADNc o gen).
Tres enfoques generales
Parecía haber tres enfoques generales:
El enfoque que uno podría tomar también se rige por si la proteína es particularmente abundante en un tejido específico, cuando uno podría esperar que enfoques menos sofisticados y más laboriosos tengan posibilidades de éxito.
Otro punto a destacar es que, al menos con los eucariotas, primero se buscaría un clon de cDNA, y sólo se intentaría un clon genómico después de haberlo empleado como sonda de hibridación.
1. Enfoques 'sin expresión'
En los enfoques sin expresión, uno se basó en la secuencia de aminoácidos para identificar el ADN clonado. Uno de estos enfoques fue usar sondas de hibridación contra tramos de aminoácidos, cuyos codones tenían una redundancia limitada (Met y Trp tienen un solo codón y algunos otros aminoácidos solo dos) usando condiciones de hibridación de baja rigurosidad. Esto requería suerte. Alternativamente, se podrían secuenciar clones aleatorios y esperar encontrar uno que se correlacionara con la secuencia de aminoácidos. En ese momento, la secuenciación del ADN era lenta y laboriosa, por lo que solo era aplicable a las proteínas que eran relativamente abundantes en el tejido a partir del cual se preparó la biblioteca.
2. Enfoques de expresión directa
La expresión directa implicaba generalmente el uso de un vector de expresión bacteriano que producía una fusión de una proteína bacteriana con una parte de la proteína eucariótica. (Estadísticamente, solo uno de cada seis clones tendría el marco de lectura correcto en una proteína de fusión). Este enfoque se vio favorecido si uno tenía un anticuerpo, que no requería una proteína completa.
3. Enfoques de expresión indirecta
Por expresión indirecta se entiende el uso de ADNc clonado inmovilizado para seleccionar los ARNm correspondientes ("selección híbrida") que podrían expresarse en un sistema libre de células. Esto era apropiado si la característica distintiva requería una proteína de longitud completa, como en el caso de la actividad biológica o el tamaño.
Específico para el gen de la insulina, el siguiente artículo es, por lo que sé, el primero en aislarlo:
Aprovecharon el hecho de que la insulina es producida por las células β en el páncreas y, por lo tanto, están enriquecidas en ARNm de insulina. Después de aislar el ARN poli(A) y realizar la transcripción inversa, se esperaba que la banda principal observada en la electroforesis del ADNc resultante perteneciera al gen de la insulina:
Parecía probable que los fragmentos [principales] se derivaran del cDNA de insulina debido a su prominencia en la preparación total de cDNA. Por lo tanto, estos fragmentos, así como las preparaciones completas de ADNc, se usaron en los experimentos de clonación.
Así clonaron este ADNc, lo secuenciaron y descubrieron que contenía la secuencia codificante de proinsulina completa:
Dado que el ARNm contiene una secuencia poli(A) terminal, la hebra de ADN [clonada] que contiene poli(dA) terminal 3' tiene el mismo sentido. Esta hebra determina una secuencia de aminoácidos que corresponde exactamente a la región codificante completa para la proinsulina I de rata y 13 de los 23 aminoácidos de la secuencia prepeptídica.
Con esta secuencia determinada y debido a su alto grado de conservación, el gen humano homólogo podría aislarse hibridando con ADNc de insulina de rata:
David
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canadiense
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